Гельминтов диагностика: Лабораторная диагностика гельминтозов

Лабораторная диагностика гельминтозов

Гельминты, которые также известны как глисты, являются паразитами человеческого организма. Патология имеет общее воздействие на организм, отягощает наличие хронических патологий, снижает иммунитет и может приводить к серьезным органическим заболеваниям.

Анализы

Исследование кала на гельминты

1 день

от 250 ₽

В корзину

ПЦР гельминты + простейшие:Lamblia intestinalis (Giardia), Cryptosporidium parvum, Ascaris lumbricoides (Аскаридоз), Blastocystis, Diphyllobothrium latum

3-4 дня (кроме субботы, воскресенья)

от 1 680 ₽

В корзину

Комплекс Гельминты: Ascaris lumbricoides (Аскаридоз), Opistorchis felineus (Описторхоз), Diphyllobothrium latum, Taenia solium

3-4 дня (кроме субботы, воскресенья

от 1 680 ₽

В корзину

Гельминтозы часто встречаются у детей, чем могут задерживать их физическое и психологическое развитие.

 Ведя свою жизнедеятельность в организме, гельминты выделяют различные продукты обменных процессов, чем вызывают постоянную интоксикацию у пациента. Паразиты могут функционировать в различных тканях и органах: некоторые из них тропны к дыхательной системе, большинство — к пищеварительной, некоторые живут в нервных тканях.

Проходить диагностику необходимо регулярно, из профилактических соображений. Риск заразиться гельминтозом есть у всех, так как заражение может произойти в ряде ситуаций. Чаще всего, гельминты попадают в организм вместе с плохо вымытыми овощами, фруктами, некачественной водой, необработанным мясом и рыбой. Некоторые гельминты проникают в виде промежуточных форм развития. Это происходит контактным путем, может сопровождать использование грязного постельного белья, посуды. Более высокий риск у тех, кто держит дома четвероногих друзей. Еще одна особенность данной группы патологий — если болеет один член семьи, скорее всего болеют все остальные. Поэтому, проходить диагностику тоже нужно всем вместе.

Виды современной диагностики гельминтозов

Развитие лабораторной диагностики гельминтозов привело к появлению различных методов исследования:

• анализы кала: макроскопический, микроскопический, нативный мазок, метод Фюллеборга, Калантаряна, Горячева, Шульмана, Харада, анализ на энтеробиоз;
• серологические методы;
• лабораторное исследование крови, мокроты.

Ниже описаны наиболее распространенные методы диагностики гельминтозов.

• Копрограмма. Самый популярный метод диагностики, который проводится разными методами и включает несколько вариантов оценки кала: макроскопия, микроскопия, бактериология, химический анализ. Позволяет определить наличие частиц гельминтов, а также их яйца и споры.
• Макроскопический и микроскопический метод имеют общую концепцию, но отличаются оптическим разрешением. Соответственно, микроскопическая оценка более точная и позволяет определить меньшие по размеру признаки гельминтоза.
• Методы обогащения основаны на том, что личинки, благодаря своему весу, могут оседать или наоборот — всплывать на поверхность раствора. Это позволяет определить наличие гельминта и дифференцировать его вид.
• Метод Фюллеборга проводится таким образом: в емкость помещается небольшое количество кала, готовится раствор с водой и солью, тщательно перемешивается и отстаивается. Полученную пленку помещают на предметное стекло и изучают под микроскопом. Изучается и поверхностный слой раствора, и его осадок, так как в различных слоях появляются яйца различных паразитов. Метод прост в применении. сравнительно недорогой и эффективный.
• Анализ по Калантаряну тоже проводится с использованием солевого раствора. Отличается плотность насыщения воды солью. Изучается только поверхностный слой раствора.
• Метод Горячева предполагает изучение осадка, для чего используется изотонический раствор. Яйца набухают и оседают на дно емкости. Полученный реактив оценивают под микроскопом. Методика эффективная, но довольно сложна в применении.
• Анализ по Красильникову основан на действии поверхностно активных веществ. Под их действием яйца глистов выпадают в осадок, который и изучается под микроскопом.
• Оценка кала по Шульману предполагает обнаружение живых личинок. используется свежий кал, который подвергается круговому перемешиванию. Яйца концентрируются в центре, благодаря действию круговых движений и особенностям веса. Той палочкой, которой размешивался раствор, делается мазок на стекле, после чего проводится оценка под микроскопом.
• Методика Харада и Мори рекомендована ВОЗ. Применяется для того, чтобы определить анкилостомоз и отличить его от других гельминтозов.
• Анализ на энтеробиоз применяется для того, чтобы определить наличие яиц остриц и цепня бычьего. Необходимо провести перианальный смыв или соскоб. Необходимо соблюдать правильную технику взятия анализа. У детей можно собирать мазок во время сна. Соскоб собирается ватной палочкой или тампоном, есть также специальная клейкая лента. В лаборатории оценивается мазок на стекле.
• Серологические методы. Основаны на реакции “антиген-антитело”. Для этого, препарат крови соединяется с готовыми стандартными растворами, которые содержат антигены известных гельминтов. У пациента, который поражен паразитами, формируются антитела к ним. Соответственно, при проведении серологической диагностики, проявляется реакция антигенов с антителами. Чтобы определить, с какими именно антигенами произошла реакция, используется специфическая маркировка. Таким образом, в результате можно узнать, какие антитела есть в сыворотке, а соответственно и какие гельминты паразитируют в организме.
• Другие анализы на гельминтозы. 

Помимо перечисленных анализов, применяется исследование различных тканей и жидкостей организма. Поиск гельминтов возможен благодаря детальной диагностике мочи, мокроты. Это предназначено для диагностики паразитов, тропных к мочеполовой и дыхательной системе, соответственно. Методика обладает высокой точностью и дает качественные результаты.

Как собрать и сдать материал, чтобы повысить точность диагностики?

Необходимо проконсультироваться с врачом на предмет целесообразности сдачи анализа. К примеру, время сдачи анализов зависит от проведенного лечения, некоторых заболеваний и медицинских манипуляций. Чтобы не тратить время и средства зря, лучше посоветуйтесь и пройдите диагностику в более подходящее время.

Сбор материала проводится в правильную емкость — стерильный, сухой контейнер. Он предназначен для разового использования и продается в аптечных пунктах. В комплекте есть лопатка для сбора кала и плотная крышка.

Не стоит специально проводить туалет промежности перед сбором материала. Если вы планируете сбор кала для анализа, лучше произвести акт дефекации в чистое судно или горшок. Не допускайте смешивания мочи и кала. Возьмите материал с нескольких мест — начала. средины и конечного отрезка. с разной глубины. Не допускайте обветривания кала, сразу закрывайте тару крышкой.

Желательно проводить сбор кала после привычного акта дефекации. не следует использовать препараты, которые стимулируют процесс, так как это может исказить лабораторную картину. Оптимальный вариант — сбор материала после пробуждения. Вы можете выпить стакан воды или позавтракать, чтобы стимулировать пищеварительный тракт.

Расшифровка результатов исследования

В норме, в каловых массах не должно быть личинок или частей гельминтов. Любое появление данных элементов считается патологическим состоянием. Если есть клинические признаки гельминтоза, но они не подтвердились — анализ проводится несколько раз и применяется несколько разных методик.

Гельминтоз – симптомы, причины, признаки и методы лечения глистной инвазии у взрослых в «СМ-Клиника»

Лечением данного заболевания занимается Гастроэнтеролог

Записаться онлайн Заказать звонок

• О заболевании
• Виды
• Симптомы
• Причины
• Диагностика
• Мнение эксперта
• Лечение
• Профилактика
• Вопросы и ответы
• Врачи

О заболевании

На текущий момент на территории России встречается до 70 разновидностей гельминтов. Всего известных науке паразитов, вызывающих глистные инвазии, насчитывается до 250 видов.

Механизм заражения простой: яйца паразитов попадают в организм человека вместе с пищей или загрязненной водой, после чего закрепляются в определенных органах и начинают размножение. В некоторых случаях инфицирование происходит при близком контакте здорового человека с носителем или при использовании чужих предметов гигиен, нижнего белья. Отдельные типы паразитов способны проникать в организм вместе с вдыхаемым воздухом.

Виды

С учетом особенностей заражения, специалисты выделяют:

• биогельминтозы: для развития и передачи возбудителя требуется промежуточный хозяин;
• геогельминтозы: промежуточный хозяин отсутствует, созревание яиц и/или личинок происходит в почве;
• контактные гельминтозы: возбудитель передается напрямую от человека к человеку.

В более широком смысле специалисты выделяют две основные группы паразитов, наиболее часто поражающих организма человека: круглые черви или нематоды и плоские черви, которые включают в себя ленточных червей и сосальщиков.

Симптомы

В клиническом течении гельминтозов у взрослых пациентов с учетом признаков выделяют две основные фазы:

• острую, которая длится до 2 месяцев;
• хроническую, которая продолжается до нескольких лет.

Различные виды гельминтов поражают различные отделы организма:

• аскариды, бычий и свиной цепень, острицы – толстая кишка;
• трематоды – печень, желчевыводящие пути;
• эхинококки, легочные сосальщики – органы дыхательной системы;
• эхинококки, альвеококки, шистосомозы – отделы ЦНС и периферической нервной системы;
• некаторы, цестодозы – система кровообращения;
• трихинелла, филярии – органы лимфатической структуры.

Основными симптомами гельминтозов у взрослых в острой фазе становятся:

• мышечные боли;
• повышение температуры тела;
• озноб;
• болезненность в животе;
• метеоризм и другие диспепсические явления;
• общее ухудшение самочувствия;
• слабость;
• быстрая утомляемость;
• сухой кашель;
• одышка;
• повышенная раздражительность.

Некоторые пациенты отмечают выраженное снижение аппетита, другие наоборот жалуются на постоянное чувство голода, иногда на изменение вкусовых пристрастий.

Хроническая форма глистной инвазии у взрослых сопровождается признаками общей интоксикации организма и специфическими симптомами, которые обусловлены местом локализации паразитов. Чаще всего ими выступают:

• постоянные боли в животе, усиливающиеся после еды, физической работы;
• метеоризм;
• вздутие живота;
• расстройство стула.

Сопутствующими симптомами становятся:

• постоянная усталость;
• апатия;
• немотивированная потеря веса;
• высыпания на коже;
• кожный зуд;
• чрезмерная раздражительность;
• вспышки аппетита, перемежающиеся с полным равнодушием к еде.

При ультразвуковом исследовании органов брюшной полости можно заметить отчетливое увеличение печени и селезенки. С помощью лабораторных анализов крови можно определить выраженную железодефицитную анемию и недостаток некоторых минералов в организме.

При миграции кишечных паразитов в близко расположенные органы и структуры у женщин могут развиться вагиниты, вульвовагиниты, эндометриты, сальпингиты и сальпингоофориты.

При поражении сердечно-сосудистой и дыхательной системы ведущими признаками заболевания станут:

• выраженная одышка;
• частое сухое покашливание;
• чувство усталости, слабости;
• аритмия.

При поражении органов лимфатической системы возможно увеличение лимфатических узлов, отечность в области гениталий и молочных желез.

Причины

Основной причиной развития гельминтозов становится употребление в пищу продуктов, внутри или на поверхности которых имеются личинки или яйца паразитов:

• сырой и недостаточно прожаренной говядины, свинины, курицы и других сортов мяса;
• свежей красной рыбы;
• сырых яиц;
• плохо вымытых фруктов, овощей, плодов и зелени.

Иногда заражение происходит через питьевую воду, которая не проходит систему фильтрации, и через воду, содержащуюся в природных водоемах, бассейнах.

Контактным способом гельминты могут передаться через нижнее и постельное белье, предметы общего пользования (полотенца, посуду, столовые приборы, дверные ручки и т.д.), а также при использовании чужих средств личной гигиены.

Получить консультацию

Если у Вас наблюдаются подобные симптомы, советуем записаться на прием к врачу. Своевременная консультация предупредит негативные последствия для вашего здоровья.

Узнать подробности о заболевании, цены на лечение и записаться на консультацию к специалисту Вы можете по телефону:

+7 (495) 292-39-72

Заказать обратный звонок Записаться онлайн

Почему «СМ-Клиника»?

1

Лечение проводится в соответствии с клиническими рекомендациями

2

Комплексная оценка характера заболевания и прогноза лечения

3

Современное диагностическое оборудование и собственная лаборатория

4

Высокий уровень сервиса и взвешенная ценовая политика

Диагностика

После общего осмотра, сбора анамнеза и оценки жалоб пациента врач отправляет больного с подозрением на глистную инвазию на лабораторные исследования. К ним относятся:

• клинический анализ крови;
• анализ кала на яйца глистов;
• ИФА или ПЦР по показаниям;
• специфические тесты для оценки функции печени;
• соскоб на энтеробиоз;
• гистология различных тканей и биологических жидкостей.

В обязательном порядке назначается ультразвуковое исследование печени, селезенки, почек, а также рентгенография органов ЖКТ. Дополнительно могут быть использованы компьютерная или магнитно-резонансная томография, эндоскопические методики обследования разных отделов кишечника и другие процедуры.

Мнение эксперта

Распространенность гельминтозов в отдельных регионах страны достигает 10%. Виной тому не только низкое качество пищевой продукции, но и несоблюдение элементарных правил безопасности. Нельзя употреблять в пищу сырое мясо и рыбу, покупать товары, особенно полуфабрикаты и готовые блюда, в сомнительных торговых точках. Необходимо тщательно и обязательно с мылом мыть перед едой руки, а также фрукты, овощи и другие плоды природы, даже если они выращены собственноручно на своей грядке. В земле могут находиться зараженные фекалии, в которых яйца гельминтов превосходно сохраняются в течение длительного времени. При появлении любых признаков недомогания, симптомов, которые могут указывать на гельминтоз, необходимо за лечением обращаться к квалифицированным специалистам и ни в коем случае не пользоваться народными методиками.

Бутенко Елена Владимировна

Врач-гепатолог, врач-гастроэнтеролог, к.м.н.

Лечение

Госпитализации пациентов для проведения адекватной терапии в подавляющем большинстве случаев не требуется. Лечение гельминтоза у взрослых выполняется в амбулаторном режиме под контролем врача и с регулярными лабораторными проверками. В условиях стационара проходят терапию только те, у кого на фоне глистной инвазии развилось осложнение или состояние отягощается хроническими системными заболеваниями.

Основа лечения – противогельминтные препараты различного спектра действия. Дозировку, схему приема и конкретный тип лекарственного средства подбирает только лечащий врач, основываясь на данных лабораторных исследований, весе и возрасте пациента.

Дополнительно могут быть назначены:

• детоксикационные мероприятия;
• жаропонижающие средства;
• противоаллергические и противозудные препараты;
• диуретики при отеках.

Пациентам показано соблюдение легкой диеты с ограничением тяжелых продуктов, жареных, копченых и маринованных блюд, которые могут оказать дополнительное раздражающее действие на органы ЖКТ.

Профилактика

В качестве мер профилактики рекомендовано:

• контролировать качество питьевой воды, используя кипяченую, тщательно фильтрованную или бутилированную воду;
• не есть сырое мясо и рыбу;
• приобретать пищевые продукты в официальных торговых точках;
• мыть овощи, фрукты, ягоды и зелень перед употреблением;
• не пользоваться чужими средствами индивидуальной гигиены;
• регулярно проводить влажную уборку в помещениях, где живут домашние животные;
• не есть плоды с грядки, не вымыв их;
• обрабатывать домашних животных от паразитов.

Людям, которые постоянно находятся в контакте с землей, животными, часто ездят на рыбалку и охоту, посещают страны или регионы с низким уровнем жизни, необходимо в целях безопасности дважды в год проводить медикаментозную профилактику. Как правильно это делать и какие препараты использовать, расскажет врач на личном приеме.

Вопросы и ответы

Да, если партнер заражен и недостаточно следит за личной гигиеной. Такое может случиться также при анальном сексе.

Ничего хорошего. Последствиями инвазии могут стать тяжелые хронические и острые заболевания, в числе которых пневмония, абсцесс и цирроз печени, асцит, гепатит, а также сепсис, перитонит и масса других опасных состояний.

Прогноз течения большинства гельминтозов благоприятный. Ухудшение прогноза наблюдается при развитии осложнений. Неблагоприятный прогноз при цистицеркозе центральной нервной системы, глаз, а также при эхинококкозах, если невозможно хирургическое лечение.

Заболеваниями такой группы занимается гастроэнтеролог. Если у пациента имеются хронические патологии, привлекают профильного специалиста, например, эндокринолога, кардиолога, пульмонолога и т.д. Участие при необходимости также принимает врач-терапевт, а при лечении детей – педиатр.

Это глистная инвазия, вызываемая червями из рода трематод. Этот гельминт паразитирует в клетках печени и гепатобилиарного тракта. Как заражается человек? Через инфицированную воду, а также при употреблении листьев салата, петрушки и т.п. На этих растениях могут быть личинки паразита. Заболевает протекает в 2 этапа – острый и хронический. В острой стадии может быть высокая температура, кожная сыпь, аллергическое поражение легких, увеличение печени и селезенки, повышение уровня эозинофилов в крови. Симптомы хронической стадии определяются вовлечением в патологический процесс гепатобилиарного тракта.

Гельминтозы. Актуальные вопросы клиники, диагностики, лечения. Учебное пособие. — М.: Издательство Нижегородской государственной медицинской академии, 2020.

Лейкина, Е. С. Важнейшие гельминтозы человека: моногр. / Е.С. Лейкина. — М.: Государственное издательство медицинской литературы, 2020.

Антонов М.М., Антыкова Л.П., Бабаченко И.В., Лаврова В.П. Тканевые гельминтозы у взрослых и детей. Методические рекомендации. СПб., 2004.

Покровский В.Н., Пак С.Г., Брико Н.И., Данилкин Б.К. Инфекционные болезни и эпидемиология. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007.

Патологическая физиология / Под ред. А.Д. Адо и Л.М. Ишимовой. М.: Медицина, 1980.

>

Заболевания по направлению Гастроэнтеролог

Авитаминоз Аскаридоз Атрофический гастрит Ахалазия Балантидиаз Болезнь Крона Вирусный гепатит Гастрит Гастроптоз Гастроэнтерит Гастроэнтероколит Гемангиома печени Гепатит A Гепатит B Гепатит D Гепатит Е Гепатит С Гепатомегалия Грыжа пищеводного отверстия диафрагмы Диарея Диарея при беременности Диарея путешественников Дивертикулез кишечника Дисбактериоз Диспепсия Доброкачественные новообразования пищевода Дуоденит Желтуха Желчнокаменная болезнь Жировая болезнь печени Жировой гепатоз Запор Изжога Кандидоз кишечника Киста печени Киста поджелудочной железы Кишечная колика Колит Кровь в кале Метеоризм Механическая желтуха Отравление пищевое Панкреатит Пневматоз кишечника Полипы желудка Полипы желчного пузыря Полипы кишечника Постхолецистэктомический синдром Рефлюкс-эзофагит (ГЭРБ) Синдром Жильбера Спазм пищевода Токсический гепатит Хеликобактериоз Холангит Холестаз Холецистит Хронический гастрит Хронический холецистит Целиакия Цирроз печени Энтерит Энтероколит Эрозивный гастрит Язва пищевода Язвенная болезнь желудка и двенадцатиперстной кишки Язвенный колит

Все врачи

м. ВДНХ

м. Белорусская

м. Молодёжная

м. Текстильщики

м. Курская

м. Севастопольская

м. Чертановская

м. Крылатское

м. Войковская

Старопетровский проезд, 7А, стр. 22

ул. Клары Цеткин, д. 33 корп. 28

м. Балтийская

Старопетровский проезд, 7А, стр. 22

ул. Клары Цеткин, д. 33 корп. 28

м. Марьина Роща

м. Новые Черёмушки

м. Водный стадион

м. Улица 1905 года

м. Юго-Западная

м. Сухаревская

Все врачи

Загрузка

Лицензии

Перейти в раздел лицензииПерейти в раздел правовая информация

Методы диагностики гельминтов, передающихся через почву – последние достижения

1. Гельминтозы, передающиеся через почву. Доступна с: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/soil-transmitted-helminth-infections. По состоянию на 16 декабря 2020 г.

2. Колелла В., Брэдбери Р., Трауб Р. Ancylostoma ceylanicum. Тренды Паразитол . 2021; 25: S1471–4922. doi: 10.1016/j.pt.2021.04.013 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Hotez PJ, Alvarado M, Basáñez MG, et al. Исследование глобального бремени болезней, 2010 г.: интерпретация и последствия для забытых тропических болезней. PLoS Negl Trop Dis . 2014:8. doi: 10.1371/journal.pntd.0002865 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Hay SI, Abajobir AA, Abate KH, et al. Глобальные, региональные и национальные годы жизни с поправкой на инвалидность (DALY) для 333 заболеваний и травм и ожидаемая продолжительность здоровой жизни (HALE) для 195 стран и территорий, 1990–2016 гг.: систематический анализ для исследования глобального бремени болезней, 2016 г. Ланцет . 2017; 390:1260–1344. doi: 10.1016/S0140-6736(17)32130 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Кишечные нематодозы — причина 3 уровня | Институт показателей и оценки здоровья n.d. Доступна с: http://www.healthdata.org/results/gbd_summaries/2019/intestinal-nematode-infections-level-3-cause. По состоянию на 18 января 2021 г.

6. Kuong K, Fiorentino M, Perignon M, et al. Когнитивные способности и статус железа отрицательно связаны с анкилостомозом у камбоджийских школьников. Am J Trop Med Hyg . 2016;95:856–863. doi: 10.4269/ajtmh.15-0813 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Clarke NE, Clements ACA, Doi SA, et al. Дифференциальный эффект массовой дегельминтизации и целенаправленной дегельминтизации для борьбы с передающимися через почву гельминтами у детей: систематический обзор и метаанализ. Ланцет . 2017; 389: 287–297. doi: 10.1016/S0140-6736(16)32123-7 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Pabalan N, Singian E, Tabangay L, Jarjanazi H, Boivin MJ, Ezeamama AE. Передающиеся через почву гельминтозы, потеря образования и когнитивные нарушения у детей школьного возраста: систематический обзор и метаанализ. PLoS Negl Trop Dis . 2018;12(1):e0005523. doi: 10.1371/journal.pntd.0005523 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Garrison A, Boivin M, Khoshnood B, et al. Гельминтная инфекция, передающаяся через почву, во время беременности и долгосрочное нейрокогнитивное и поведенческое развитие ребенка: предполагаемая когорта матери и ребенка в Бенине. PLoS Negl Trop Dis . 2021;15(3):e0009260. doi: 10.1371/journal.pntd.0009260 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Андерсон Р., Траскотт Дж., Холлингсворт Т.Д. Охват и периодичность массового применения препаратов необходимы для ликвидации персистентной передачи почвенных гельминтов. Philos Trans R Soc B Biol Sci . 2014;369(1645):20130435. doi: 10.1098/rstb.2013.0435 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Montresor A, Mupfasoni D, Michaelov A, et al. Глобальный прогресс в борьбе с гельминтозами, передающимися через почву, в 2020 г. и цели Всемирной организации здравоохранения на 2030 г. PLoS Negl Trop Dis . 2020;14:e0008505. doi: 10.1371/journal.pntd.0008505 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Hotez PJ, Bundy DAP, Beegle K, et al. Гельминтозы: гельминтозы, передающиеся через почву, и шистосомоз. В: Jamison DT, Breman JG, Measham AR, et al. редакторы. Приоритеты борьбы с болезнями в развивающихся странах . 2-е; Нью-Йорк: Издательство Оксфордского университета; 2006. [Google Scholar]

13. Keizer J, Utzinger J. Лечение гельминтов, передающихся через почву, в масштабах всего сообщества эффективно с точки зрения справедливости. Ланцет . 2019;393(10185):2011–2012. doi: 10.1016/S0140-6736(18)32981-7 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Амоа И.Д., Адегоке А.А., Стенстрём Т.А. Передаваемые через почву гельминтозы, связанные с повторным использованием сточных вод и ила: обзор текущих данных. Trop Med Int Heal . 2018;23:692–703. doi: 10.1111/tmi.13076 [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Khurana S, Sethi S. Лабораторная диагностика гельминтозов, передающихся через почву. Троп Паразитол . 2017;7:86. doi: 10.4103/TP.TP_29_17 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Garcia LS, Arrowood M, Kokoskin E, et al. Лабораторная диагностика паразитов желудочно-кишечного тракта. Clin Microbiol Rev . 2018;31:e00025–17. doi: 10.1128/CMR.00025-17 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Всемирная организация здравоохранения. Стенд для диагностики кишечных паразитов . второе изд. Женева: Всемирная организация здравоохранения; 2019. [Google Scholar]

18. Tarafder MR, Carabin H, Joseph L, Balolong E, Olveda R, McGarvey ST. Оценка чувствительности и специфичности метода исследования стула Като-Каца для выявления анкилостомоза, инфекций Ascaris lumbricoides и Trichuris trichiura у людей в отсутствие «золотого стандарта». Int J Parasitol . 2010;40:399–404. doi: 10.1016/j.ijpara.2009.09.003 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Аллам А.Ф., Фараг Х. Ф., Лотфи В., Фаузи Х.Х., Эльхадад Х., Шехаб А.Ю. Сравнение методов концентрации FLOTAC, Kato-Katz и формалинового эфира для диагностики кишечных паразитарных инфекций у школьников в сельской местности Египта. Паразитология . 2020;148(3):289–294. doi: 10.1017/S0031182020001675 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Coulibaly JT, Ouattara M, Becker SL, et al. Сравнение чувствительности и количества фекальных яиц Mini-FLOTAC с использованием фиксированных образцов стула и метода Като-Каца для диагностики Schistosoma mansoni и гельминтов, передающихся через почву. Акта Троп . 2016; 164:107–116. doi: 10.1016/j.actatropica.2016.08.024 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Periago MV, Diniz RC, Pinto SA, et al. Правильный инструмент для работы: обнаружение гельминтов, передающихся через почву, в районах, эндемичных по другим гельминтам. PLoS Negl Trop Dis . 2015;9(8):e0003967. doi: 10.1371/journal.pntd.0003967 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Barda B, Cajal P, Villagran E, et al. Mini-FLOTAC, Kato-Katz и McMaster: три метода, одна цель; основные моменты из северной Аргентины. Векторы-паразиты . 2014;7(1):271. doi: 10.1186/1756-3305-7-271 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Эндрис М., Текесте З., Лемма В., Кассу А. Сравнение Маунт и методы диагностики кишечных гельминтных инфекций по концентрации формол-эфира в Эфиопии. ISRN Паразитология . 2013;180439. doi: 10.5402/2013/180439 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Levecke B, Behnke JM, Ajjampur SSR, et al. Сравнение чувствительности и количества фекальных яиц методов подсчета яиц Макмастера и толстого мазка Като-Каца для гельминтов, передающихся через почву. PLoS Negl Trop Dis . 2011;5:e1201. doi: 10.1371/journal.pntd.0001201 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Habtamu K, Degarege A, Ye-Ebiyo Y, Erko B. Сравнение Kato-Katz и FLOTAC Методы диагностики гельминтозов, передающихся через почву. Паразитол Инт . 2011;60:398–402. doi: 10.1016/j.parint.2011.06.020 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Knopp S, Rinaldi L, Khamis IS, et al. Один FLOTAC более чувствителен, чем тройной анализ Kato-Katz, для диагностики вялотекущих гельминтозов, передающихся через почву. Trans R Soc Trop Med Hyg . 2009; 103: 347–354. doi: 10.1016/j.trstmh.2008.11.013 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Utzinger J, Rinaldi L, Lohourignon LK, et al. FLOTAC: новый чувствительный метод диагностики анкилостомоза у человека. Trans R Soc Trop Med Hyg . 2008; 102:84–90. doi: 10.1016/j.trstmh.2007.09.009 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Cools P, Vlaminck J, Albonico M, et al. Диагностическая эффективность одиночного и дублированного тестов Kato-Katz, Mini-FLOTAC, FECPAKG2 и количественной ПЦР для обнаружения и количественного определения гельминтов, передающихся через почву, в трех эндемичных странах. PLoS Negl Trop Dis . 2019:13. doi: 10.1371/journal.pntd.0007446 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Adugna S, Kebede T, Mekonnen Z, Degarege A, Liang S, Erko B. Диагностические характеристики Mini Parasep ^® Не содержащий растворителей концентратор фекальных паразитов по аналогии с Kato-Katz и McMaster для диагностики кишечных паразитарных инфекций. Trans R Soc Trop Med Hyg . 2017; 111: 572–578. doi: 10.1093/trstmh/try010 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Николай Б., Брукер С.Дж., Пуллан Р.Л. Чувствительность диагностических тестов на гельминтозы человека, передающиеся через почву: метаанализ в отсутствие истинного золотого стандарта. Int J Parasitol . 2014;44:765–774. doi: 10.1016/j.ijpara.2014.05.009 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Beg M, Zeeshan M, Zafar A, et al. Использование фекальных концентраторов Parasep filter для обнаружения кишечных паразитов в образцах стула в обычных условиях. Indian J Pathol Microbiol . 2011;54:121. doi: 10.4103/0377-4929.77358 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Khanna V, Sagar S, Khanna R, Chawla K. Сравнительное исследование метода осаждения формалин-этилацетат и растворителя Mini Parasep ^® Бесплатный метод экспресс-диагностики кишечных паразитов. Троп Паразитол . 2018;8:29–32. doi: 10.4103/tp.TP_44_17 [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Мевара А., Хурана С., Гупта С., Мунда В.С., Сингх С., Сегал Р. Диагностические характеристики Mini Parasep ^® Концентратор фекальных паразитов, не содержащий растворителей, для диагностики кишечных паразитарных инфекций. Indian J Med Microbiol . 2019; 37: 381–386. doi: 10.4103/ijmm.IJMM_19_44 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Useh M, Asuquo A, Otu-Bassey I, Ubi O. Оценка эффективности концентратора фекальных паразитов Mini Parasep SF; Новый метод против прямого мазка и метод концентрации эфира формола для обнаружения кишечных паразитов в кале. J Med Lab Sci . 2011;20:458. [Google Scholar]

35. Levecke B, Montresor A, Albonico M, et al. Оценка антигельминтной эффективности мебендазола у школьников в шести странах, эндемичных по гельминтам, передающимся через почву. PLoS Negl Trop Dis . 2014;8(10):e3204. doi: 10.1371/journal.pntd.0003204 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. David ED, Lindquist WD. Определение удельного веса яиц некоторых гельминтов с помощью центрифугирования в градиенте плотности сахарозы. Дж Паразитол . 1982; 68: 916–919. doi: 10.1186/1756-3305-5-288 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Levecke B, Cools P, Albonico M, et al. Определение пороговых значений для классификации гельминтозов, передающихся через почву, от умеренной до тяжелой для FECPAKG2, McMaster, Mini-FLOTAC и количественной ПЦР. PLoS Negl Trop Dis . 2020;14(7):e0008296. doi: 10.1371/journal.pntd.0008296 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Knopp S, Glinz D, Rinaldi L, et al. FLOTAC: перспективный метод обнаружения яиц гельминтов в фекалиях человека. Trans R Soc Trop Med Hyg . 2009;103:1190–1194. doi: 10.1016/j.trstmh.2009.05.012 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Lim MD, Brooker SJ, Belizario VY, et al. Диагностические инструменты для программ контроля и ликвидации передающихся через почву гельминтов: путь к разработке диагностических продуктов. PLoS Negl Trop Dis . 2018;12(3):e0006213. doi: 10.1371/journal.pntd.0006213 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Techion: FECPAKG2: лучшее тестирование для лучшей производительности. Доступна с: https://www.techion.com/FECPAKG2. По состоянию на 17 декабря 2020 г.

41. Ayana M, Vlaminck J, Cools P, et al. Модификация и оптимизация протокола FECPAKG2 для обнаружения и количественного определения яиц гельминтов, передающихся через почву, в стуле человека. PLoS Negl Trop Dis . 2018;12(10):e0006655. doi: 10.1371/journal.pntd.0006655 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Moser W, Bärenbold O, Mirams GJ, et al. Диагностическое сравнение между FECPAKG2 и методом Като-Каца для анализа яиц гельминтов, передающихся через почву, в стуле. PLoS Negl Trop Dis . 2018;12(6):e0006562. doi: 10.1371/journal.pntd.0006562 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Sukas S, van Dorst B, Kryj A, Lagatie O, De Malsche W, Stuyver LJ. Разработка платформы «лаборатория на диске» с цифровыми изображениями для идентификации и подсчета яиц паразитов в фекалиях человека и животных. Микромашины . 2019;10:852. doi: 10.3390/mi10120852 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Requena-Méndez A, Chiodini P, Bisoffi Z, Buonfrate D, Gotuzzo E, Muñoz J. Лабораторная диагностика и последующее наблюдение стронгилоидоза: систематический обзор. PLoS Negl Trop Dis . 2013;7(1):e2002. doi: 10. 1371/journal.pntd.0002002 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Garcia LS. Диагностическая медицинская паразитология. Руководство по коммерческим методам клинической микробиологии. В: Аллан Л., редактор. Диагностическая медицинская паразитология . Вашингтон, округ Колумбия, США: ASM Press; 2014: 274–305. doi: 10.1128/9781555817961.ch21 [CrossRef] [Google Scholar]

46. Хайлегебриэль Т., Петрос Б., Эндешоу Т. Оценка паразитологических методов обнаружения Strongyloides Stercoralis среди людей в отдельных медицинских учреждениях Аддис-Абебы, Эфиопия. Эфиоп J Health Sci . 2017;27:515–522. doi: 10.4314/ejhs.v27i5.10 [Статья PMC free] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

. Trans R Soc Trop Med Hyg . 1991; 85: 515–518. doi: 10.1016/0035-9203(91)

-Y [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Silva LP, Da Costa Barcelos IS, Passos-Lima AB, Espindola FS, Barbosa Campos DM, Costa-Cruz Дж. М. Вестерн-блоттинг с использованием Strongyloides ratti Антиген для обнаружения антител IgG в качестве подтверждающего теста при стронгилоидозе человека. Мем Инст Освальдо Круз . 2003; 98: 687–691. doi: 10.1590/S0074-02762003000500017 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Schaffel R, Nucci M, Carvalho E, Braga M, Portugal R, Pulcheri W. Значение иммуноферментного теста assay) для диагностики стронгилоидоза у пациентов с иммуносупрессией из-за гематологических злокачественных новообразований. Am J Trop Med Hyg . 2001; 65: 346–350. doi: 10.4269/ajtmh.2001.65.346 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Арифин Н., Ханафия К.М., Ахмад Х., Нордин Р. Серодиагностика и раннее выявление инфекции Strongyloides stercoralis . J Microbiol Immunol Infect . 2019;52:371–378. doi: 10.1016/j.jmii.2018.10.001 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Ravi V, Ramachandran S, Thompson RW, Andersen JF, Neva FA. Характеристика рекомбинантного иммунодиагностического антигена (НИЭ) из Strongyloides stercoralis Личинки стадии L3. Мол Биохим Паразитол . 2002; 125:73–81. doi: 10.1016/S0166-6851(02)00214-1 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Ramanathan R, Burbelo PD, Groot S, Iadarola MJ, Neva FA, Nutman TB. Анализ систем иммунопреципитации люциферазы повышает чувствительность и специфичность диагностики инфекции Strongyloides stercoralis . J Заразить Dis . 2008; 198: 444–451. doi: 10.1086/589718 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Rascoe LN, Price C, Shin SH, Mcauliffe I, Priest JW, Handali S. Разработка анализов на основе рекомбинантного антигена Ss-NIE-1 для иммунодиагностики стронгилоидоза. PLoS Negl Trop Dis . 2015;9(4):e0003694. doi: 10.1371/journal.pntd.0003694 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Стронгилоидоз. Am J Trop Med Hyg . 2019;101:432–435. дои: 10.4269/ajtmh.19-0053 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Sykes AM, McCarthy JS. Копроантигенный диагностический тест на инфекцию Strongyloides. PLoS Negl Trop Dis . 2011;5(2):e955. doi: 10.1371/journal.pntd.0000955 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Lagatie O, Verheyen A, Van Hoof K, et al. Обнаружение инфекции Ascaris lumbricoides с помощью ИФА копроантигена ABA-1. PLoS Negl Trop Dis . 2020;14:e0008807. doi: 10.1371/journal.pntd.0008807 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Элсмор Д.А. Флинн Л.А. Изобретатель; Правопреемник Idexx Laboratories Inc. Устройство, набор и способ для захвата и обнаружения антигена анкилостомы. 2007. Патент США US20080311557A1.

58. Lagatie O, Verheyen A, Van Asten S, et al. 2-метил-пентаноил-карнитин (2-MPC): биомаркер мочи для патентной инфекции Ascaris lumbricoides . Научный представитель . 2020;10:15780. doi: 10.1038/s41598-020-72804-y [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Лагатие О., Нюмбе Эдиаге Э., Пиккемаат Дж. А., Джуарди Й. , Стуйвер Л. Дж. 2-метилбутирамид, ранее идентифицированный биомаркер мочи для Ascaris lumbricoides , отсутствует у инфицированных индонезийцев. Векторы-паразиты . 2017;10(1):1–3. doi: 10.1186/s13071-017-2600-z [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Ayana M, Cools P, Mekonnen Z, et al. Сравнение четырех протоколов экстракции ДНК и трех протоколов сохранения для молекулярного обнаружения и количественного определения гельминтов, передающихся через почву, в стуле. PLoS Negl Trop Dis . 2019;13(10):e0007778. doi: 10.1371/journal.pntd.0007778 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. O’Connell EM, Nutman TB. Обзорная статья: молекулярная диагностика гельминтов, передающихся через почву. Am J Trop Med Hyg . 2016;95:508–514. doi: 10.4269/ajtmh.16-0266 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Grant JR, Pilotte N, Williams SA. Пример использования геномики и биоинформатического конвейера для разработки чувствительной и видоспецифичной диагностики на основе ПЦР гельминтов, передающихся через почву. Передняя Генетика . 2019;10:883. doi: 10.3389/fgene.2019.00883 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Howe KL, Bolt BJ, Cain S, et al. WormBase 2016: расширение для проведения исследований генома гельминтов. Рез. нуклеиновых кислот . 2016;44:D774–80. doi: 10.1093/nar/gkv1217 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Easton AV, Oliveira RG, O’Connell EM, et al. Мультипараллельная количественная ПЦР обеспечивает повышенную чувствительность и широту диагностики желудочно-кишечных паразитов человека: полевые выводы о влиянии массовой дегельминтизации. Векторы-паразиты . 2016;9:38. doi: 10.1186/s13071-016-1314-y [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Pilotte N, Papaiakovou M, Grant JR, et al. Усовершенствованное обнаружение гельминтозов, передающихся через почву, на основе ПЦР с использованием подхода секвенирования нового поколения к дизайну анализа. PLoS Negl Trop Dis . 2016;10:e0004578. doi: 10.1371/journal.pntd.0004578 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Lynn M, Polderman Anton M, Vinkeles Melchers NVS. Диагностика полипаразитизма в условиях высокой распространенности в Бейре, Мозамбик: обнаружение кишечных паразитов в образцах фекалий с помощью микроскопии и ПЦР в реальном времени. PLoS Negl Trop Dis . 2017;11(1):e0005310. doi: 10.1371/journal.pntd.0005310 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Verweij JJ, Canales M, Polman K, et al. Молекулярная диагностика Strongyloides stercoralis в образцах фекалий с использованием ПЦР в реальном времени. Trans R Soc Trop Med Hyg . 2009; 103: 342–346. doi: 10.1016/j.trstmh.2008.12.001 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

68. Verweij JJ, Brienen EA, Ziem J, Yelifari L, Polderman AM, Van Lieshout L. Одновременное обнаружение и количественная оценка Ancylostoma duodenale, Necator americanus и Oesophagostomum bifurcum в образцах фекалий с помощью мультиплексной ПЦР в реальном времени Am. J Trop Med Hyg . 2007; 77: 685–690. doi: 10.4269/ajtmh.2007.77.685 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

69. Папаяков М., Гассер Р.Б., Littlewood DTJ. Количественная ПЦР-диагностика гельминтозов, передающихся через почву: фекальные или непостоянные? Тренды Паразитол . 2019;35(7):491–500. doi: 10.1016/j.pt.2019.04.006 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

70. Dunn JC, Papaiakovou M, Han KT, et al. Повышенная чувствительность количественной ПЦР по сравнению с методом Като-Каца необходима для точной оценки распространенности гельминтоза, передающегося через почву, в условиях, в которых было проведено несколько раундов массового введения лекарств. Векторы-паразиты . 2020;13(1):324. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

71. Papaiakovou M, Wright J, Pilotte N, et al. Объединение как стратегия своевременной диагностики передающихся через почву гельминтов в стуле: ценность и воспроизводимость. Векторы-паразиты . 2019;12(1):443. [Бесплатная статья ЧВК] [PubMed] [Google Scholar]

72. Дэн М.Х., Чжун Л.Ю., Камолнетр О., Лимпанонт Ю., Лв З.Ю. Обнаружение гельминтов методом изотермической амплификации, опосредованной петлей: обзор обновленных технологий и перспективы на будущее. Заразить Dis Poverty . 2019; 8:1–22. doi: 10.1186/s40249-019-0530-z [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

73. Rashwan N, Diawara A, Scott ME, Prichard RK. Изотермические диагностические тесты для выявления почвенных гельминтов на основе метода SmartAmp2. Векторы-паразиты . 2017;10:496. doi: 10.1186/s13071-017-2420-1 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

74. Shiraho EA, Eric AL, Mwangi IN, et al. Развитие петлевой изотермической амплификации для диагностики Ascaris lumbricoide s в образцах фекалий. J Паразитол Рез . 2016;2016. doi: 10.1155/2016/7376207 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

75. Mugambi RM, Agola EL, Mwangi IN, Kinyua J, Shiraho EA, Mkoji GM. Разработка и оценка метода петлевой изотермической амплификации (LAMP) для обнаружения анкилостомоза ( Necator americanu s) в образцах фекалий. Векторы-паразиты . 2015;8:574. doi: 10.1186/s13071-015-1183-9[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

76. Watts MR, James G, Sultana Y, et al. Петлевой анализ изотермической амплификации (LAMP) Strongyloides stercoralis в стуле, в котором используется метод визуального обнаружения с флуоресцентным красителем SYTO-82. Am J Trop Med Hyg . 2014;90:306–311. doi: 10.4269/ajtmh.13-0583 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

77. Wakid MH. Анализ кала на скрытую кровь и желудочно-кишечные паразитарные инфекции. Дж Паразитол Рез . 2010;2010:434801. doi: 10.1155/2010/434801 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

78. Амоа И.Д., Сингх Г., Стенстром Т.А., Редди П. Обнаружение и количественная оценка передаваемых через почву гельминтов в пробах окружающей среды: обзор текущего состояния дел и перспективы на будущее. Акта Троп . 2017; 169:187–201. doi: 10.1016/J.ACTATROPICA.2017.02.014 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

79. Oge H, Oge S. Количественное сравнение различных методов обнаружения яиц Toxocara canis в образцах песка. Вет Паразитол . 2000;92:75–79. doi: 10.1016/S0304-4017(00)00276-4 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

: https://www.who.int/water_sanitation_health/publications/gsuweg4/en/. По состоянию на 18 января 2021 г.

81. Агентство по охране окружающей среды U. Экологические нормы и технологии, контроль патогенов и привлечение переносчиков в осадке сточных вод. Доступна с: https://www.epa.gov/sites/production/files/2015-07/documents/epa-625-r-92-013.pdf. По состоянию на 18 января 2021 г.

82. Хименес Б., Майя К., Веласкес Г. и др. Идентификация и количественная оценка яиц патогенных гельминтов с помощью системы цифровых изображений. Эксперимент Паразитол . 2016; 166: 164–172. doi: 10.1016/j.exppara.2016. 04.016 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

83. Rothrock MJ, Hiett KL, Kiepper BH, Ingram K, Hinton A. Количественная оценка зоонозных бактериальных патогенов в пробах воды для обработки коммерческого птицеводства с использованием цифровой полимеразной цепной реакции (Droplet Digital PCR). Adv Microbiol . 2013;03:403–411. doi: 10.4236/aim.2013.35055 [CrossRef] [Google Scholar]

Методы диагностики гельминтов, передаваемых через почву: влияние на меры борьбы

1. Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) Профилактика и борьба с шистосомозом и гельминтозом, передающимся через почву. Совместное заявление ВОЗ-ЮНИСЕФ; Всемирная организация здравоохранения; Женева, Швейцария: 2004 г. [Google Scholar]

2. Всемирная организация здравоохранения ВОЗ. Инвестиции для преодоления глобального воздействия забытых тропических болезней: Третий доклад ВОЗ о забытых болезнях. Пресса Всемирной организации здравоохранения; Женева, Швейцария: 2015. стр. 1–19.1. [Google Scholar]

3. Шакти Х., Нокес К., Субагио Хертанто В., Хендратно С., Холл А., Банди Д.А., Сатото П. Доказательства связи между заражением анкилостомами и когнитивными функциями в индонезийской школе дети. Троп. Мед. Междунар. Здоровье. 1999; 4: 322–334. doi: 10.1046/j.1365-3156.1999.00410.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Пуллан Р.Л., Смит Дж.Л., Ясрасария Р., Брукер С.Дж. Глобальные показатели инфицирования и бремени болезней, передающихся через почву, гельминтозов в 2010 г. Parasit. Векторы. 2014;7:37. дои: 10.1186/1756-3305-7-37. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Элкинс М.Х.Д., Андерсон Р.М. Влияние индивидуальных, социальных групп и бытовых факторов на распространение Ascaris lumbricoides в сообществе и последствия для стратегий борьбы. Паразитология. 1989; 98: 125–134. doi: 10.1017/S003118200005976X. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Gilles H.M. Селективная первичная медико-санитарная помощь: стратегии борьбы с болезнями в развивающихся странах. XVII. Анкилостомоз и анемия. Преподобный Заразить. Дис. 1985; 7: 111–118. дои: 10.1093/клиниды/7.1.111. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Бетони Дж., Брукер С., Альбонико М., Гейгер С.М., Лукас А., Димерт Д., Хотез П.Дж. Гельминтные инфекции, передающиеся через почву: аскаридоз, трихоцефалез и анкилостома. Ланцет. 2006; 367:1521–1532. doi: 10.1016/S0140-6736(06)68653-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Goodman D., Haji H.J., Bickle Q.D., Stoltzfus R.J., Tielsch J.M., Ramsan M., Savioli L., Albonico M. Сравнение методов обнаружения яиц ascaris, trichuris и анкилостомы в стуле младенцев, а также эпидемиология инфекции у младенцев занзибари. Являюсь. Дж. Троп. Мед. Гиг. 2007; 76: 725–731. дои: 10.4269/ajtmh.2007.76.725. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Адегника А.А., Агнанджи С.Т., Чай С.К., Рамхартер М., Брейтлинг Л., Кенджо Э., Иссифу С., Язданбахш М., Комбила М., Кремснер П.Г. Повышенная распространенность кишечных гельминтозов во время беременности в африканском сообществе к югу от Сахары. Вена. Клин. Wochenschr. 2007; 119: 712–716. doi: 10.1007/s00508-007-0907-z. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Lammie P.J., Fenwick A., Utzinger J. Схема успеха: интеграция программ борьбы с забытыми тропическими болезнями. Тенденции Паразитол. 2006; 22:313–321. doi: 10.1016/j.pt.2006.05.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) Профилактика и борьба с шистосомозом и передающимися через почву гельминтами: отчет Комитета экспертов ВОЗ. Всемирная организация здравоохранения; Женева, Швейцария: 2002. стр. 1–57. (Женевская серия технических отчетов). [PubMed] [Google Scholar]

12. Brady M.A., Hooper P.J., Ottesen E.A. Прогнозируемые выгоды от интеграции программ NTD в странах Африки к югу от Сахары. Тенденции Паразитол. 2006; 22: 285–291. doi: 10.1016/j.pt.2006.05.007. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

13. Брукер С., Клементс А.С.А., Банди Д.А.П. Глобальная эпидемиология, экология и борьба с передающимися через почву гельминтозами. Доп. Паразитол. 2006; 62: 221–261. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

14. Фенвик А. Новые инициативы против червей в Африке. Транс. Р. Соц. Троп. Мед. Гиг. 2006; 100: 200–207. doi: 10.1016/j.trstmh.2005.03.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Molyneux D.H., Hotez P.J., Fenwick A. «Вмешательства с быстрым воздействием»: как политика комплексного контроля над забытыми тропическими болезнями в Африке может принести пользу бедным. ПЛОС Мед. 2005;2:e336. doi: 10.1371/journal.pmed.0020336. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Руководство Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ): Профилактическая химиотерапия для борьбы с передающимися через почву гельминтозами в группах риска. Всемирная организация здравоохранения; Женева, Швейцария: 2017. [Google Scholar]

17. Кейзер Дж., Утцингер Дж. Эффективность современных препаратов против передающихся через почву гельминтозов: систематический обзор и метаанализ. ДЖАМА. 2008; 299:1937–1948. дои: 10.1001/jama.299.16.1937. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Адегника А.А., Лёч Ф., Маурин Р., Мба О., Рамхартер М. Новые данные о лечении трихоцефалеза человека и устойчивости к нему. Курс. Троп. Мед. Отчет 2015: 218–223. doi: 10.1007/s40475-015-0061-z. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

19. Бут М., Вунацу П., Н’Горан Э., Таннер М., Утзингер Дж. Влияние усилий по отбору проб и эффективность метода Като-Каца в диагностике сочетанных инфекций Schistosoma mansoni и анкилостомы в сельской местности. Берег Слоновой Кости. Паразитология. Паразитология. 2003; 127: 525–531. doi: 10.1017/S0031182003004128. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Banoo S., Bell D., Bossuyt P., Herring A., Mabey D., Poole F., Smith P.G., Sriram N., Wongsrichanalai C., Linke Р. и др. Оценка диагностических тестов на инфекционные заболевания: Общие принципы. Нац. Преподобный Микробиолог. 2006;4:S21–S31. doi: 10.1038/nrmicro1523. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

21. Пилинг Р.В., Смит П.Г., Боссайт П.М.М. Руководство по диагностическим оценкам. Нац. Преподобный Микробиолог. 2006;4:S2–S6. doi: 10.1038/nrmicro1522. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Истон А.В., Оливейра Р.Г., Уокер М., О’Коннелл Э.М., Ньенга С.М., Мвандавиро К.С., Вебстер Дж.П., Натман Т.Б., Андерсон Р.М. Источники изменчивости в измерении интенсивности инфекции Ascaris lumbricoides с помощью Като-Каца и количественной ПЦР. Паразит. Векторы. 2017;10:256. doi: 10.1186/s13071-017-2164-y. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Андерсон Р.М., Шад Г.А. Нагрузка на анкилостомы и количество фекальных яиц: анализ биологической основы изменчивости. Транс. Р. Соц. Троп. Мед. Гиг. 1985; 79: 812–825. doi: 10.1016/0035-9203(85)

-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Чизбро М. Методы паразитологического тестирования и концентрации в районной лаборатории Практика в тропических странах. Технологии тропического здоровья. Том 306. Издательство Кембриджского университета; Кембридж, Великобритания: 2005. стр. 178–306. [Академия Google]

25. Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) Справочник по диагностике кишечных паразитов. Всемирная организация здравоохранения; Женева, Швейцария: 1994. [Google Scholar]

26. Katz N., Chavas A., Pellegrino J. Простое устройство для количественного анализа толстого мазка кала при Schistosoma mansosni. Преподобный Инст. Мед. Троп. Сан-Паулу. 1972; 14: 379–400. [PubMed] [Google Scholar]

27. Marti H., Escher E. SAF-альтернативный фиксирующий раствор для паразитологических образцов кала. Швейцария. Мед. Wochenschr. 1990;120:1473–1476. [PubMed] [Google Scholar]

28. Richardson D.J., Gross J., Smith M.C., Ichardson D.E.J.R., Ross J.E.G. Сравнение прямого мазка Като-Каца и флотации нитрата натрия для обнаружения геогельминтных инфекций. Комп. Паразитол. 2008; 75: 339–341. дои: 10.1654/4340.1. [CrossRef] [Google Scholar]

29. Steinmann P., Utzinger J., Du Z.-W., Zhou X.-N. Глава 2. Мультипаразитизм: забытая реальность в глобальном, региональном и локальном масштабе. В: Zhou X.-N., Bergquist R., Olveda R., Utzinger J., editors. Важные гельминтозы в Юго-Восточной Азии: разнообразие и потенциал для контроля и ликвидации, часть B. Vol. 73. Академическая пресса; Кембридж, Массачусетс, США: 2010. стр. 21–50. [Академия Google]

30. Cringoli G., Rinaldi L., Maurelli M.P., Utzinger J. FLOTAC: Новые мультивалентные методы качественной и количественной копромикроскопической диагностики паразитов у животных и человека. Нац. протокол 2010;5:503. doi: 10.1038/nprot.2009.235. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Янг К.Х., Буллок С.Л., Мелвин Д.М., Спруилл К.Л. Этилацетат как заменитель диэтилового эфира в методе осаждения из эфира формалина. Дж. Клин. микробиол. 1979; 10: 852–853. doi: 10.1128/JCM.10.6.852-853.1979. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Ридли Р.Г. Диагностика выходит на первый план. Нац. Преподобный Микробиолог. 2006;6:S1. doi: 10.1038/nrmicro1521. [CrossRef] [Google Scholar]

33. Пеллетье Л. Л., мл., Бейкер С.Б., Гам А.А., Натман Т.Б., Нева Ф.А. Диагностика и оценка лечения хронического стронгилоидоза у бывших военнопленных. Дж. Заразить. Дис. 1988; 157: 573–576. doi: 10.1093/infdis/157.3.573. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Koga K., Kasuya S., Khamboonruang C., Sukhavat K., Ieda M., Takatsuka N., Kita K., Ohtomo H. Модифицированный метод чашек с агаром для обнаружения Strongyloides Stercoralis. Являюсь. Дж. Троп. Мед. Гиг. 1991;45:518–521. doi: 10.4269/ajtmh.1991.45.518. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Гарсия Л., Брукнер Д. Диагностическая медицинская паразитология. Пресса Американского общества микробиологии; Стерлинг, Вирджиния, США: 2001. стр. 1–791. [Google Scholar]

36. Аракаки Т., Хасэгава Х., Асато Р., Икеширо Т., Киндзё Ф., Сайто А., Иванага М., Декабрь Р., Январь А. Новый метод обнаружения Strongyloides stercoralis из стула человека. Япония. Дж. Троп. Мед. Гиг. 1988; 16:11–17. doi: 10.2149/tmh2973.16.11. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

37. Салазар С.А., Гутьеррес С., Берк С.Л. Значение метода агаровых чашек для диагностики кишечного стронгилоидоза. Диагн. микробиол. Заразить. Дис. 1995; 23: 141–145. doi: 10.1016/0732-8893(95)00247-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Дельгадо П. Г., Лима П. Дж. Диагностика стронгилоидоза: важность метода Бермана. Являюсь. Дж. Диг. Дис. 1961; 6: 899–904. [PubMed] [Google Scholar]

39. Харада Ю., Мори О. Новый метод культивирования анкилостомы. Йонаго Акта Мед. 1955;1:177–179. [Google Scholar]

40. Се Х.К. Метод пробирки с фильтровальной бумагой для диагностики Ancylostoma Duodenale, Necator Americanus и Strongyloides Stercoralis. Всемирная организация здравоохранения; Женева, Швейцария: 1962. стр. 27–30. (Технический отчет ВОЗ, серия 255). [Google Scholar]

41. Саса М., Хаяши С., Танака Х., Ширасака Р. Применение метода культивирования в пробирке для исследования анкилостомы и связанной с ней нематодной инфекции человека. Япония. Дж. Эксп. Мед. 1958;28:129–137. [PubMed] [Google Scholar]

42. Саперо Дж.Дж., Лоулесс Д.К. Техника сохранения окраски MIF для идентификации кишечных простейших. Являюсь. Дж. Троп. Мед. Гиг. 1953; 2: 613–619. doi: 10.4269/ajtmh.1953.2.613. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Благг В., Шлёгель Э.Л., Мансур Н.С., Халаф Г.И. Новая техника концентрации для демонстрации яиц простейших и гельминтов в фекалиях1. Являюсь. Дж. Троп. Мед. Гиг. 1955; 4: 23–28. doi: 10.4269/ajtmh.1955.4.23. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

44. Фауст Э., Савиц В., Тоби Дж., Одом В., Перес С., Линциком Д.Р. Сравнительная эффективность различных методик диагностики простейших в фекалиях. Дж. Паразитол. 1939; 25: 241–262. дои: 10.2307/3272508. [CrossRef] [Google Scholar]

45. Утцингер Дж., Ринальди Л., Лохуриньон Л.К., Ронер Ф., Циммерманн М.Б., Чаннен А.Б., Н’Горан Э.К., Кринголи Г. FLOTAC: новый чувствительный метод диагностики Анкилостомоз человека. Транс. Р. Соц. Троп. Мед. Гиг. 2008; 102: 84–90. doi: 10. 1016/j.trstmh.2007.09.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Knopp S., Rinaldi L., Khamis I.S., Stothard J.R., Rollinson D., Maurelli M.P., Steinmann P., Marti H., Cringoli G., Utzinger J. Один FLOTAC более чувствителен, чем тройной анализ Kato-Katz, для диагностики вялотекущих гельминтозов, передающихся через почву. Транс. Р. Соц. Троп. Мед. Гиг. 2009; 103: 347–354. doi: 10.1016/j.trstmh.2008.11.013. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Кнопп С., Глинц Д., Ринальди Л., Мохаммед К.А., Н’Горан Э.К., Стотард Дж.Р., Марти Х., Кринголи Г., Роллинсон Д., Утцингер J. FLOTAC: Перспективный метод обнаружения яиц гельминтов в фекалиях человека☆ Trans. Р. Соц. Троп. Мед. Гиг. 2009 г.;103:1190–1194. doi: 10.1016/j.trstmh.2009.05.012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Glinz D., Silué K.D., Knopp S., Lohourignon L.K., Yao K.P., Steinmann P., Rinaldi L., Cringoli G., N’Goran E.K., Utzinger J. , Сравнение диагностической точности Като-Каца, чашки с агаром Кога, концентрации эфира и FLOTAC для Schistosoma mansoni и гельминтов, передающихся через почву. PLoS Негл. Троп. Дис. 2010;4:e754. doi: 10.1371/journal.pntd.0000754. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Левекке Б., Бенке Дж.М., Аджампур С.С.Р., Альбонико М., Аме С.М., Шарлье Дж., Гейгер С.М., Хоа Н.Т.В., Камва Нгассам Р.И., Котце А.С., и др. Сравнение чувствительности и подсчета фекальных яиц методом подсчета яиц по Макмастеру и методом толстого мазка по Като-Кацу для выявления гельминтов, передающихся через почву. PLoS Негл. Троп. Дис. 2011;5:e1201. doi: 10.1371/journal.pntd.0001201. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Levecke B., De Wilde N., Vandenhoute E., Vercruysse J. Полевая валидность и осуществимость четырех методов обнаружения Trichuris у обезьян: Модель мониторинга эффективности лекарств в общественном здравоохранении? PLoS Негл. Троп. Дис. 2009 г.;3:e366. doi: 10.1371/journal.pntd.0000366. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Бунгиро Р.Д., Каппелло М. Обнаружение экскреторных/секреторных копроантигенов при экспериментальной инфекции анкилостомы. Являюсь. Дж. Троп. Мед. Гиг. 2005; 73: 915–920. doi: 10.4269/ajtmh.2005.73.915. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Sykes A.M., McCarthy J.S. Копроантигенный диагностический тест на инфекцию Strongyloides. PLoS Негл. Троп. Дис. 2011;5:e955. doi: 10.1371/journal.pntd.0000955. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Ten Hove R.J., Van Esbroeck M., Vervoort T., Van den Ende J., Van Lieshout L., Verweij J.J. Молекулярная диагностика кишечных паразитов у возвращающихся путешественников. Евро. Дж. Клин. микробиол. Заразить. Дис. 2009; 28:1045–1053. doi: 10.1007/s10096-009-0745-1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Танючи М., Вервей Дж.Дж., Нур З., Собуз С.У., Ван Лисхаут Л., Петри В.А., мл., Хак Р., Хоупт Э.Р. Высокопроизводительная мультиплексная ПЦР и обнаружение семи кишечных паразитов с использованием шариков Luminex. Являюсь. Дж. Троп. Мед. Гиг. 2011; 84: 332–337. дои: 10.4269/ajtmh.2011.10-0461. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Ван Лисхаут Л., Ростенберг М. Клинические последствия новых диагностических инструментов для кишечных паразитов. клин. микробиол. Заразить. 2015;21:520–528. doi: 10.1016/j.cmi.2015.03.015. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Arndt M.B., John-Stewart G., Richardson B.A., Singa B., Van Lieshout L., Verweij J.J., Sangaré L.R., Mbogo L.W., Naulikha J.M., Walson J.L. Impact эффективности тестов на гельминтозы при оценке факторов риска и исходов у ВИЧ-позитивных взрослых. ПЛОС ОДИН. 2013;8:e81915. doi: 10.1371/journal.pone.0081915. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Одновременное обнаружение Entamoeba histolytica, Giardia lamblia и Cryptosporidium parvum в образцах фекалий с помощью мультиплексной ПЦР в реальном времени. Дж. Клин. микробиол. 2004;42:1220–1223. doi: 10.1128/JCM.42.3.1220-1223.2004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Verweij J.J., Brienen E.A.T., Ziem J., Yelifari L., Polderman A.M. Одновременное обнаружение и количественная оценка Ancylostoma duodenale, Necator americanus и Oesophagostomum bifurcum в образцах фекалий с использованием мультиплекса. Являюсь. Дж. Троп. Мед. Гиг. 2007; 77: 685–690. doi: 10.4269/ajtmh.2007.77.685. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Mullis K., Faloona F., Scharf S., Saiki R., Horn G., Erlich H. Специфическая ферментативная амплификация ДНК in vitro: полимеразная цепная реакция. 1986. Биотехнология. 1992; 24:17–27. [PubMed] [Google Scholar]

60. Лоренц Т.С. Полимеразная цепная реакция: базовый протокол плюс стратегии устранения неполадок и оптимизации. Дж. Вис. Эксп. 2012:e3998. дои: 10.3791/3998. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Mckeand J.B. Молекулярная диагностика паразитических нематод. Паразитология. 1998; 117:S87–S96. doi: 10.1017/S00311820996. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Нотоми Т., Окаяма Х., Масубучи Х., Йонекава Т., Ватанабэ К., Амино Н., Хасэ Т. Петлевая изотермическая амплификация ДНК. Нуклеиновые Кислоты Res. 2000;28:E63. дои: 10.1093/нар/28.12.e63. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Мори Ю., Канда Х., Нотоми Т. Петлевая изотермическая амплификация (LAMP): Недавний прогресс в исследованиях и разработках. Дж. Заразить. Чемотер. 2013;19:404–411. doi: 10.1007/s10156-013-0590-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Rashwan N., Diawara A., Scott M.E., Prichard R.K. Изотермические диагностические тесты для выявления почвенных гельминтов на основе метода SmartAmp2. Паразит. Векторы. 2017;10:496. doi: 10.1186/s13071-017-2420-1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Дювер Д.Л., Клайн М.С., Ромсос Э.Л., Томан Б. Оценка цифровой ПЦР капель для количественного определения геномной ДНК человека: преобразование копий на нанолитр в нанограммы ядер ДНК на микролитр. Анальный. Биоанал. хим. 2018; 410:2879–2887. doi: 10.1007/s00216-018-0982-1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Акоста Сото Л., Сантисима-Тринидад А.Б., Борнай-Ллинарес Ф.Дж., Мартин Гонсалес М., Паскуаль Валеро Х. А., Рос Муньос М. Количественная ПЦР и Цифровая ПЦР для обнаружения яиц Ascaris lumbricoides в регенерированной воде. Биомед Рез. Междунар. 2017;2017:7515409. doi: 10.1155/2017/7515409. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Mejia R., Vicuña Y., Broncano N., Sandoval C., Vaca M., Chico M., Cooper P.J., Nutman T.B. Новый многопараллельный подход полимеразной цепной реакции в реальном времени для восьми желудочно-кишечных паразитов обеспечивает улучшенные диагностические возможности для групп риска с ограниченными ресурсами. Являюсь. Дж. Троп. Мед. Гиг. 2013;88:1041–1047. doi: 10.4269/ajtmh.12-0726. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

68. Штрак К., Кларк Н., Оберн К.В., Ваз Нери С., Кхиеу В., Трауб Р.Дж., Джекс А.Р. Разработка и валидация инструмента мультиплексной тандемной количественной ПЦР для диагностики гельминтозов человека, передающихся через почву. PLoS Негл. Троп. Дис. 2019;13:e0007363. doi: 10.1371/journal.pntd. 0007363. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

69. Cunningham L.J., Stothard J.R., Osei-Atweneboana M., Armoo ​​S., Verweij J.J., Adams E.R. Разработка ПЦР в реальном времени на основе мультиплексирования анализ кривой плавления с высоким разрешением: экспериментальное исследование по обнаружению и различению передающихся через почву гельминтов и видов шистосом. Паразитология. 2018; 145:1733–1738. doi: 10.1017/S0031182018001361. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

70. Бергквист Р., Йохансен М.В., Утцингер Дж. Диагностические дилеммы в гельминтологии: какие инструменты использовать и когда? Тенденции Паразитол. 2009; 25: 151–156. doi: 10.1016/j.pt.2009.01.004. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

71. Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) Руководство по контрольным материалам для антиген-обнаруживающих малярийных ДЭТ Инструменты для подготовки и валидации. Всемирная организация здравоохранения; Geneva, Switzerland: 2019. [Google Scholar]

72.