Инвитро биопсия: Сдать анализ на гистологию биопсийного материала и материала, полученного при хирургических вмешательствах

Сдать анализ на гистологию биопсийного материала и материала, полученного при хирургических вмешательствах

Описание

Метод определения Микроскопия

Исследуемый материал Смотрите в описании

Доступен выезд на дом

Взятие биоматериала оплачивается отдельно.

Согласно требованиям п. 17 Правил проведения патолого-анатомических исследований, утв. Приказом Минздрава России от 24.03.2016 № 179н, в целях уточнения диагноза заболевания (состояния) с учетом требований стандартов  медицинской помощи и клинических рекомендаций (протоколов лечения) по вопросам оказания медицинской помощи на этапе микроскопии биопсийного (операционного) материала врачом-патологоанатомом дополнительно может быть назначено проведение:

1. дополнительных методов окраски микропрепаратов (постановки реакции, определения) — гистохимических, иммуногистохимических, электронно-микроскопических, молекулярно-биологических, генетических и иных методов;
2. дополнительных методов микроскопии — поляризационной, флуоресцентной, трансмиссионной или сканирующей электронной и иных методов.

Применение вышеуказанных методов исследования, назначенных врачом-патологоанатомом при проведении исследования в целях уточнения диагноза заболевания (состояния), подлежит дополнительной оплате по стоимости,  указанной в утвержденном прайс-листе медицинского центра ИНВИТРО

Проводятся исследования любого материала, отчуждённого у пациентов с различными патологическими процессами: бронхобиопсии, гастробиопсии, колонобиопсии, биопсии ЛОР-органов и другие биопсии различных органов и тканей, взятые инвазивными и эндоскопическими методами.

Также исследуется операционный материал, органы и ткани, удалённые при различных операциях по поводу онкологических заболеваний, специфических и неспецифических, воспалительных и не воспалительных процессах. При этом даётся гистологический диагноз с оценкой уровня дифференцировки или степени злокачественности опухоли, степени распространённости патологического процесса или клинической стадии, состояние краёв резекции, фоновых изменений.

При диагностических биопсиях даётся микроскопическое описание и нозологическое заключение. В ясных и банальных случаях микроскопическое описание не даётся или ограничивается минимально, заключение ограничивается гистологическим диагнозом.

Гистологический диагноз может быть описательным в тех случаях, когда морфологические изменения не специфичны и не свидетельствуют в пользу какого-либо заболевания или когда недостаточно представляется клиницистами клиническая картина конкретного пациента.

Гистологическое заключение даётся в соответствии с последними гистологическими классификациями ВОЗ и медицинской номенклатурой принятой у нас в стране.

Для качественного исследования необходимо правильно оформлять направление на гистологическое исследование:

• заполнять все указанные в направлении пункты с точным указанием места локализации взятого материала, его связь с окружающими тканями, обязательно указывать основные клинические проявления и давность процесса;
• иссечение кусочков из органов для диагностической биопсии следует проводить исключительно острым инструментом, избегать сжатия пинцетом или зажимом с целью предупреждения разминания и деформации тканей. Не рекомендуется получение биопсийного материла электроинструментами, так как происходит деформация гистологических тканей и диагноз возможно поставить только в предположительной форме;
• объект, взятый для гистологического исследования, помещают в заранее приготовленную ёмкость с фиксирующей жидкостью 10% формалин; 10% формалин наливают в чистую посуду, так, чтобы формалина было не менее чем в 10 раз больше объёма фиксируемого объекта, после чего посуду закрывают герметической крышкой или пробкой. Нельзя применять формалин более высокой концентрации или формалин с вышедшим сроком годности — с белым осадком, нельзя помещать мелкий диагностический материал в посуду из тёмного малопрозрачного стекла с узким горлышком;
• в случаях, когда диагностический материал содержит примесь большого количества крови (соскобы со слизистых оболочек женских половых органов), следует, до помещения в фиксирующую жидкость, освободиться от крови, путём промывки соскобов в ванночке с теплым физиологическим раствором, поместив их в марлевый мешочек, либо промыть тёплой водой под краном, а затем, промокнув излишки промывной жидкости, поместить в фиксатор. При этом соскоб не должен содержать кровь, которая пагубно влияет на обработку материала, уменьшает количество представительного диагностического материала и снижает полноценность гистологического исследования;
• посуда с диагностическим или операционным материалом обязательно маркируется: пишется фамилия, инициалы и возраст пациента, присваивается номер. Маркировка не должна проводиться на крышке, закрывающей посуду;
• фрагменты ткани или органа, полученные при биопсии с диагностической целью, запрещается делить на части и посылать в разные патологоанатомические лаборатории;
• материал для патогистологического исследования должен быть достаточно представительным, а кусочки, после специальной обработки и окраски, сохранять информацию для диагноза или диагностического описания;
• материал в виде слизи, экссудата или крови, а также очень мелкий материал (менее 1 мм) не считается полноценным объектом гистологического исследования.

Подготовка

Взятие биоматериала оплачивается отдельно. 

 

Условия подготовки определяются лечащим врачом. Взятие биоматериала для данного исследования проводится лечащим врачом пациента или самостоятельно; в медицинских офисах, отвечающих на запрос «Биопсия тканей женской половой системы» во вкладке Адреса и услуги>>.

Направительный бланк

Иммуногистохимическое исследование маркера ранней диагностики дисплазии с высокой степенью риска озлокачествления: p16INK4a

Метод определения

Гистологическое исследование биоптатов шейки матки согласно гистологической классификации Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) с окрашиванием гематоксилином-эозином. Иммуногистохимическое исследование с применением антител к белку p16

INK4a (пероксидазный и авидин-биотиновый методы).

Исследуемый материал Биоптат опухоли, фиксированный в забуференном 10% растворе формалина

Доступен выезд на дом

Комплексное исследование биоптатов шейки матки, включающее морфологическое описание, оценку экспрессии p16^INK4a для определения биологического потенциала диспластических изменений в эпителии шейки матки.

Рак шейки матки является превалирующим среди онкологических заболеваний у женщин и остается одной из важных медицинских и социальных проблем в экономически развитых странах. Ежегодная статистика первичной выявляемости рака шейки матки составляет 10-12 случаев на 100 тысяч женщин. От стадии и распространенности опухоли на момент выявления зависят возможности терапии и прогноз выживаемости. 

Своевременное распознавание и корректное лечение предраковых процессов шейки матки имеют существенное значение в связи с локальным характером прединвазивной и микроинвазивной стадий рака шейки матки. Удаление опухоли в таких случаях приводит не только к полному выздоровлению больных в ряде случаев, но и к репродуктивной, психоэмоциональной и социальной реабилитации женщин. Проведение органосохраняющего лечения рака шейки матки является новым направлением в современной онкогинекологии. 

В настоящее время доказано, что основным этиологическим фактором в индуцировании и развитии рака шейки матки является вирус папилломы человека (ВПЧ). Однократное выявление ВПЧ в эпителии шейки матки недостаточно информативно. Подавляющее большинство ВПЧ-инфекций являются скоротечными и существенно не влияют на механизмы роста эпителиальных клеток, организм способен избавиться от ВПЧ-инфекции в течение 6-12 месяцев. Однако небольшая доля инфицирования определенными типами ВПЧ может сохраняться и в отсутствие лечения приводить к малигнизации процесса. Патологический процесс протекает бессимптомно. В результате интеграции ВПЧ в геном эпителиальных клеток, в ядрах клеток происходит репликация вирусных онкобелков Е6 и Е7, которые могут вызвать неопластическую трансформацию с нарушением регуляции клеточного цикла. 

Белок p16^INK4a представляет собой ингибитор циклин-зависимых киназ и играет важную роль в регуляции клеточного цикла эукариот. Этот белок участвует в опосредованном через белок ретинобластомы (pRB) контроле перехода клетки из фазы G1 в фазу S, он подавляет опухолевый рост; повышенная экспрессия p16^INK4a может запускать остановку цикла клеточного деления. Многие виды опухолей характеризуются инактивацией гена p16^INK4a, что приводит к нарушению регуляции клеточного цикла и бесконтрольной пролиферации клеток. Но в опухолях, связанных с трансформирующим действием ВПЧ, отмечается увеличение экспрессии данного белка. Экспрессия белка p16

INK4a реактивно увеличивается при росте количества вирусных онкобелков ВПЧ Е6 и Е7. При этом повышение экспрессии p16INK4a оказывается неэффективным для регуляции клеточного цикла, поскольку онкобелки ВПЧ действуют на уровне белка ретинобластомы. Повышение экспрессии p16^INK4a применительно к этому виду опухолей рассматривают как косвенный признак интеграции ВПЧ высокого риска в геном и трансформации эпителиальных клеток под действием ВПЧ. 

Одним из важных критериев для дифференциального диагноза дисплазии умеренной и высокой степени тяжести (CIN II/III) и начальных форм рака шейки матки (Аdenocarcinoma in situ, микроинвазивная аденокарцинома) является иммуногистохимическое определение экспрессии белка p16^INK4a в сопоставлении с индексом пролиферативной активности.

 

В дисплазиях умеренной и высокой степени (в 80–100% случаев CIN II и практически во всех случаях CIN III) и инвазивном раке шейки матки определяется усиленная экспрессия белка p16^INK4a.

ERA Биопсия эндометрия | Репродуктивные научные центры Нью-Джерси

Краткий обзор рецептивности эндометрия

• Матрица рецептивности эндометрия (ERA) — это диагностическая процедура, которая может помочь определить, готова ли полость эндометрия к имплантации эмбриона.
Биопсия эндометрия
• ERA — это относительно новая процедура, которая включает биопсию небольшого образца эндометрия или слизистой оболочки матки для молекулярного анализа.
• Проблемы со слизистой оболочкой эндометрия являются одной из причин бесплодия у женщин с привычным невынашиванием беременности или многократными неудачными переносами экстракорпорального оплодотворения (ЭКО).
Биопсию
• ERA можно рассматривать для женщин, перенесших циклы ЭКО, в которых имплантация не удалась, или для женщин, у которых были множественные выкидыши или привычное невынашивание беременности.
• Результаты биопсии ERA используются для прогнозирования идеального окна имплантации для вышеуказанных пациентов.

Общие сведения о биопсии эндометрия ERA

Врачи используют ультразвуковую технологию для изучения толщины и рисунка слизистой оболочки эндометрия при подготовке к имплантации эмбриона во время цикла ЭКО. Несмотря на то, что УЗИ является установленным методом, существует подгруппа пациентов с соответствующей выстилкой эндометрия и переносом морфологически качественных эмбрионов, которые не могут успешно зачать и родить живого ребенка после цикла ЭКО.

Считается, что у некоторых пациенток могут быть изменения в «окне имплантации», которые могут снизить частоту имплантации и успешность беременности при использовании традиционного ультразвукового исследования и гормональной оценки. Анализ рецептивности эндометрия (ERA) пытается проанализировать выстилку эндометрия на молекулярном уровне и получить дополнительную информацию об этом окне имплантации путем оценки 248 генов.

Прослушайте подкаст доктора Зейглера о биопсии ERA

Как биопсия ERA может помочь при имплантации эмбриона?

Чтобы понять, как проводится тестирование ERA, полезно ознакомиться с тем, как работает женская репродуктивная система. Зачатие представляет собой сложный биологический процесс со значительным числом переменных.

Сначала яичники женщины должны выпустить яйцеклетку. Этот процесс известен как овуляция. После выхода яйцеклетка жизнеспособна только в течение 12-24 часов. Яйцеклетка должна быть оплодотворена мужской спермой, которая попадает в фаллопиевы трубы, где встречается с яйцеклеткой для оплодотворения.

Второй , получившийся эмбрион, который будет находиться на стадии развития бластоцисты, имплантируется в слизистую оболочку матки, где он затем будет развиваться. Чтобы имплантация произошла, слизистая оболочка матки должна быть способна принимать и питать эмбрион. Во время каждого месячного цикла слизистая оболочка матки женщины наиболее восприимчива в течение 4-5 дней, известного как «окно имплантации».

Биопсия

ERA может использоваться для определения того, когда слизистая оболочка матки женщины находится в этом окне имплантации. ERA также является диагностическим инструментом, используемым для определения того, является ли слизистая оболочка матки женщины фактором, способствующим повторяющимся неудачам имплантации ЭКО и повторяющимся невынашиваниям.

Увеличьте свои шансы на беременность

Кому следует рассмотреть биопсию ERA?

Биопсия

ERA может быть вариантом для женщин, уже проходящих лечение от бесплодия, и обычно рекомендуется женщинам, у которых были предыдущие неудачи цикла ЭКО или у которых был выкидыш или привычная потеря беременности.

Биопсия эндометрия по методу ERA не является частью оценки женской фертильности и обычно не рекомендуется для пациентов, которым впервые проводится ЭКО. Тем не менее, женщинам всегда важно обсудить свою личную ситуацию со своим врачом.

Что происходит во время биопсии ERA?

Процедура массива рецептивности эндометрия обычно начинается за 1–1,5 месяца до переноса замороженного эмбриона. Женщина начнет принимать последовательные гормоны, включая эстроген и прогестерон, перед процедурой, как при подготовке к переносу замороженного эмбриона. Биопсия эндометрия выполняется в стандартный день переноса эмбрионов (вместо фактического переноса эмбрионов), когда ожидается наступление окна имплантации.

Биопсия — это простая амбулаторная процедура с минимальным дискомфортом. Во время биопсии через влагалище вводится небольшой инструмент, называемый пипелей. Врач будет использовать пипетку, чтобы «поцарапать» слизистую оболочку матки и получить небольшое количество ткани для тестирования. Некоторые женщины испытывают спазмы или легкое кровотечение во время или после процедуры.

Образец будет отправлен в лабораторию, где завершится молекулярный анализ, чтобы определить лучшее время для попытки имплантации эмбриона в будущем цикле ЭКО. Есть три возможных результата.

Предвосприимчивый. Подкладка еще не готова к приему эмбриона, и вероятность имплантации меньше.

Получатель . Подкладка готова к приему эмбриона, который, скорее всего, имплантируется.

Пострецептивный. Подкладка уже достигла стадии оптимальной имплантации эмбриона, но уже не находится на этой стадии. В это время эмбрион вряд ли приживется.

Если результаты образца возвращаются как пререцептивные или пострецептивные, врачи корректируют запланированный перенос эмбрионов с учетом этих изменений

Важно отметить, что существует мало исследований, позволяющих предположить, что царапание или нарушение слизистой оболочки матки таким образом снижает способность эмбриона к имплантации. Это также не повышает вероятность имплантации. Конечно, есть еще место для исследований по этому вопросу, и наши врачи будут следить за всей новой информацией о биопсии эндометрия ERA, чтобы определить, какие пациенты могут получить пользу от этой технологии.

Связанное чтение: Передовой тест повышает шансы на успешную имплантацию

Биопсия эмбрионов, полученных в результате экстракорпорального оплодотворения, влияет на развитие мыши линии C57BL/6

1. Handyside AH, Kontogianni EH, Hardy K, Winston RM. Беременности от биопсийных предимплантационных эмбрионов человека, разделенных по полу с помощью Y-специфической амплификации ДНК. Природа. 1990; 344: 768–70. [PubMed] [Google Scholar]

2. Харди К., Мартин К.Л., Лиз Х.Дж., Уинстон Р.М., Хэндисайд А.Х. Биопсия на стадии 8 клеток не оказывает отрицательного влияния на преимплантационное развитие человека in vitro. Хум Репрод. 1990;5:708–14. [PubMed] [Google Scholar]

3. Handyside AH. Преимплантационная генетическая диагностика через 20 лет. Репрод Биомед Онлайн. 2010;21:280–2. [PubMed] [Google Scholar]

4. Harper JC, Coonen E, De Rycke M, Harton G, Moutou C, Pehlivan T, et al. Сбор данных консорциума ESHRE PGD X: циклы с января по декабрь 2007 г. с последующим наблюдением за беременностью до октября 2008 г. Hum Reprod. 2010;25:2685–707. [PubMed] [Google Scholar]

5. Harton GL, Magli MC, Lundin K, Montag M, Lemmen J, Harper JC. Консорциум ESHRE PGD/Специальная группа по эмбриологии – рекомендации по передовой практике биопсии полярного тела и эмбриона для преимплантационной генетической диагностики/скрининга (PGD/PGS) Hum Reprod. 2011;26:41–6. [PubMed] [Академия Google]

6. Киркегор К., Хиндкьяер Дж.Дж., Ингерслев Х.Дж. Эмбриональное развитие человека после удаления бластомеров: покадровый анализ. Хум Репрод. 2012; 27:97–105. [PubMed] [Google Scholar]

7. Duncan FE, Stein P, Williams CJ, Schultz RM. Влияние биопсии бластомера на преимплантационное развитие эмбриона мыши и глобальную экспрессию генов. Фертил Стерил. 2009;91:1462–5. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

8. Sugawara A, Sato B, Bal E, Collier AC, Ward MA. Удаление бластомеров у эмбрионов мышей на стадии дробления изменяет метаболизм стероидов во время беременности. Биол Репрод. 2012; 87: 1–9. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [Google Scholar]

9. Ugajin T, Terada Y, Hasegawa H, Velayo CL, Nabeshima H, Yaegashi N. Аберрантное поведение эмбриона мыши после биопсии бластомера, наблюдаемое с помощью покадровой кинематографии . Фертил Стерил. 2010;93:2723–8. [PubMed] [Google Scholar]

10. Совет NR. Руководство по уходу и использованию лабораторных животных. Вашингтон, округ Колумбия: Институт исследований лабораторных животных (ILAR) Национальной академии наук; 2011. [Google Академия]

11. Куинн П., Баррос С., Уиттингем Д.Г. Сохранение ооцитов хомяка для анализа оплодотворяющей способности сперматозоидов человека. J Reprod Fertil. 1982; 66: 161–8. [PubMed] [Google Scholar]

12. Quinn P, Kerin JF, Warnes GM. Повышение частоты наступления беременности при экстракорпоральном оплодотворении человека с использованием среды на основе состава трубной жидкости человека. Фертил Стерил. 1985; 44: 493–8. [PubMed] [Google Scholar]

13. Chatot CL, Ziomek CA, Bavister BD, Lewis JL, Torres I. Улучшенная питательная среда поддерживает развитие случайно выведенных одноклеточных эмбрионов мыши in vitro. J Reprod Fertil. 1989;86:679–88. [PubMed] [Google Scholar]

14. Kimura Y, Yanagimachi R. Интрацитоплазматическая инъекция спермы мыши. Биол Репрод. 1995; 52: 709–20. [PubMed] [Google Scholar]

15. Summers MC, McGinnis LK, Lawitts JA, Raffin M, Biggers JD. ЭКО яйцеклеток мышей в симплексной оптимизированной среде с добавлением аминокислот. Хум Репрод. 2000; 15:1791–801. [PubMed] [Google Scholar]

16. Аждук А., Ямаути Ю., Уорд М.А. Ремоделирование хроматина сперматозоидов после интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов отличается от ремоделирования при экстракорпоральном оплодотворении. Биол Репрод. 2006; 75: 442–51. [PubMed] [Академия Google]

17. Сугавара А., Пирсон Б.Л., Бланшар Д.К., Уорд М.А. Самки мышей, лишенные контакта с самцами во время внутриутробного развития, проявляют усиленное материнское поведение. Психонейроэндокринология. 2011 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

18. Thouas GA, Korfiatis NA, French AJ, Jones GM, Trounson AO. Упрощенная методика дифференциального окрашивания внутренней клеточной массы и клеток трофэктодермы мышиных и бычьих бластоцист. Репрод Биомед Онлайн. 2001; 3:25–9. [PubMed] [Академия Google]

19. Уорд М.А. Эффекты интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов у бесплодных мышей с мутацией az. Биол Репрод. 2005; 73: 193–200. [PubMed] [Google Scholar]

20. Ward MA, Burgoyne PS. Влияние делеций длинного плеча Y-хромосомы мыши на функцию сперматозоидов — анализ на основе интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов (ИКСИ). Биол Репрод. 2006; 74: 652–8. [PubMed] [Google Scholar]

21. Щигель М.А., Кусакабе Х., Янагимачи Р., Уиттингем Д.Г. Интрацитоплазматическая инъекция сперматозоидов более эффективна, чем экстракорпоральное оплодотворение, для получения эмбрионов мышей из криоконсервированных сперматозоидов. Биол Репрод. 2002; 67: 1278–84. [PubMed] [Академия Google]

22. Щигель М.А., Кусакабе Х., Янагимачи Р., Уиттингем Д.Г. Разделение подвижных популяций сперматозоидов перед замораживанием полезно для последующего оплодотворения in vitro: исследование с различными линиями мышей. Биол Репрод. 2002; 67: 287–92. [PubMed] [Google Scholar]

23. Sasabe Y. Биопсия эмбриона мыши, оплодотворенной in vitro, как доклиническая модель для преимплантационной генетической диагностики. Нихон Санка Фудзинка Гаккай Засши. 1993;45:650–6. [PubMed] [Google Scholar]

24. Gentry WL, Critser ES. Рост детенышей мышей, полученных из биопсийных бластоцист. Акушерство Гинекол. 1995;85:1003–1006. [PubMed] [Google Scholar]

25. Gentry WL, Critser ES. Потенциал развития микробиопсийных мышиных бластоцист. Акушерство Гинекол. 1995; 85: 57–9. [PubMed] [Google Scholar]

26. Ziomek CA, Johnson MH. Взаимодействие с клеточной поверхностью вызывает поляризацию восьмиклеточных бластомеров мыши при уплотнении. Клетка. 1980; 21: 935–42. [PubMed] [Google Scholar]

27. Харди К., Уорнер А., Уинстон Р.М., Беккер Д.Л. Экспрессия межклеточных контактов во время преимплантационного развития эмбриона человека. Мол Хум Репрод. 1996;2:621–32. [PubMed] [Google Scholar]

28. Bensaude O, Babinet C, Morange M, Jacob F. Белки теплового шока, первые основные продукты активности зиготических генов у эмбрионов мышей. Природа. 1983; 305: 331–3. [PubMed] [Google Scholar]

29. Телфорд Н.А., Уотсон А.Дж., Шульц Г.А. Переход от материнского к эмбриональному контролю в раннем развитии млекопитающих: сравнение нескольких видов. Мол Репрод Дев. 1990; 26: 90–100. [PubMed] [Google Scholar]

30. Pierce KE, Michalopoulos J, Kiessling AA, Seibel MM, Zilberstein M. Преимплантационное развитие эмбрионов мыши и человека, биопсированных на стадиях дробления с использованием модифицированного метода смещения. Хум Репрод. 1997;12:351–356. [PubMed] [Google Scholar]

31. Santalo J, Grossman M, Egozcue J. Влияет ли среда, не содержащая Ca2+/Mg(2+), на выживаемость преимплантационного эмбриона мыши после биопсии? Обновление репродукции человека. 1996; 2: 257–61. [PubMed] [Google Scholar]

32. Takeuchi K, Sandow BA, Morsy M, Kaufmann RA, Beebe SJ, Hodgen GD. Доклинические модели биопсии преэмбриона человека и генетической диагностики. I. Эффективность и нормальность развития преэмбриона мыши после различных методов биопсии. Фертил Стерил. 1992;57:425–30. [PubMed] [Google Scholar]

33. Wilton LJ, Shaw JM, Trounson AO. Успешная одноклеточная биопсия и криоконсервация преимплантационных эмбрионов мышей. Фертил Стерил. 1989; 51: 513–7. [PubMed] [Google Scholar]

34. Накагата Н. Криоконсервация сперматозоидов мышей. Геном Мамм. 2000; 11: 572–56. [PubMed] [Google Scholar]

35. Kawase Y, Iwata T, Ueda O, Kamada N, Tachibe T, Aoki Y, et al. Влияние частичного рассечения блестящей оболочки пьезомикроманипулятором для экстракорпорального оплодотворения с использованием замороженно-размороженных сперматозоидов мышей на скорость развития эмбрионов, перенесенных на 2-клеточной стадии. Биол Репрод. 2002; 66: 381–5. [PubMed] [Академия Google]

36. Ostermeier GC, Wiles MV, Farley JS, Taft RA. Сохранение, распространение и управление генетически модифицированными линиями мышей путем криоконсервации спермы. ПлоС один. 2008;3:e2792. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]

37. Такео Т., Накагата Н. Комбинированная среда криозащитных агентов, содержащая L-глутамин и метил-{бета}-циклодекстрин в среде для предварительной инкубации, обеспечивает высокую скорость оплодотворения для криоконсервированных Сперма мыши C57BL/6J. Лаборатория Аним. 2010;44:132–137. [PubMed] [Академия Google]

38. Такео Т., Накагата Н. Восстановленный глутатион повышает фертильность замороженной/размороженной спермы мышей C57BL/6 после воздействия метил-бета-циклодекстрина. Биол Репрод. 2011;85:1066–72. [PubMed] [Google Scholar]

39. Kawase Y, Iwata T, Toyoda Y, Wakayama T, Yanagimachi R, Suzuki H. Сравнение интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов инбредным и гибридным мышам. Мол Репрод Дев. 2001; 60:74–78. [PubMed] [Google Scholar]

40. Brinster RL, Chen HY, Trumbauer ME, Yagle MK, Palmiter RD. Факторы, влияющие на эффективность введения чужеродной ДНК мышам путем микроинъекции яиц. Proc Natl Acad Sci U S A. 1985;82:4438–42. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

41. Abramczuk J, Solter D, Koprowski H. Положительное влияние ЭДТА на развитие одноклеточных эмбрионов мыши в среде с определенным химическим составом. Дев биол. 1977; 61: 378–83. [PubMed] [Google Scholar]

42. Yamauchi Y, Ward MA. Сохранение эякулированных сперматозоидов мыши от фертильных мышей C57BL/6 и бесплодных мышей hook1/hook1, собранных из маток спаривающихся самок. Биол Репрод. 2007; 76: 1002–8. [PubMed] [Академия Google]

43. Ву Л., Эксли Г.Э., Уорнер К.М. Дифференциальная экспрессия генов-кандидатов Ped в преимплантационных эмбрионах мышей. Биол Репрод. 1998; 59: 941–52. [PubMed] [Google Scholar]

44. Rossant J. Постимплантационное развитие бластомеров, выделенных из 4- и 8-клеточных яиц мыши. J Embryol Exp Morphol. 1976; 36: 283–90. [PubMed] [Google Scholar]

45. Tarkowski AK, Ozdzenski W, Czolowska R. Одноплодные и близнецовые мыши развились из изолированных диплоидных бластомеров, поддерживаемых тетраплоидными бластомерами. Int J Dev Biol. 2001;45:591–6. [PubMed] [Google Scholar]

46. Гиритаран Г., Талби С., Донжакур А., Ди Себастьяно Ф., Добсон А.Т., Ринаудо П.Ф. Влияние экстракорпорального оплодотворения на экспрессию генов и развитие преимплантационных эмбрионов мышей.